ReadiLink trFluor Tb 抗体标记试剂盒提供了一种以微观方式标记抗体的最便捷方法。该试剂盒仅需要两个简单的混合步骤而无需纯化步骤。 试剂盒中使用的iFluor 和mFluor 染料的琥珀酰亚胺酯（SE）显示出与蛋白质的脂族胺的良好反应性和选择性，并形成羧酰胺键，其与天然肽键相同且稳定。 iFluor 和mFluor-抗体缀合物可用于免疫荧光染色，荧光原位杂交，流式细胞术和其他生物学应用。 每个ReadiLink 抗体标记试剂盒都提供了进行两次偶联反应（2×50μg蛋白质）的所有必需成分。 每个试剂盒可用于标记50-100μg单克隆，多克隆抗体或其他蛋白质（> 10 kDa），只需两个简单的混合步骤。ReadiLink trFluor Tb 抗体标记试剂盒是美国AAT Bioquest研发的产品。

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标准操作规程（标记50μg蛋白质）

将所有组分加热并在打开前将样品瓶短暂离心，并在开始结合前立即准备所需的溶液。 以下SOP是标记抗HDAC IgG抗体的实例。

1.准备蛋白质溶液（溶液A）：

为了标记50g蛋白质（假设目标蛋白质浓度为1mg / mL），将5L（总反应体积的10％）的反应缓冲液（组分B）与50L目标蛋白质溶液混合。

注1.如果您的蛋白质浓度不同，请相应调整蛋白质体积，使~50μg蛋白质可用于标记反应。

注2：为了标记100g蛋白质（假设目标蛋白质浓度为1mg / mL），将10μL（总反应体积的10％）反应缓冲液（组分B）与100μL目标蛋白质溶液混合。

注3：蛋白质应溶解于pH7.2-7.4的1X磷酸盐缓冲盐水（PBS）中;如果蛋白质溶解在甘氨酸缓冲液中，必须用1X PBS（pH 7.2-7.4）透析，或使用Amicon Ultra-0.5，Ultracel-10膜，10 kDa（来自Millipore的cat＃UFC501008）去除广泛用于蛋白质沉淀的游离胺或铵盐（如硫酸铵和乙酸铵）。

注4：不纯抗体、牛血清白蛋白（BSA）或明胶稳定的抗体不会被很好地标记。

注5：如果蛋白质浓度小于1 mg / mL，则结合效率显着降低。为获得最佳标记效率，建议最终蛋白质浓度范围为1-2 mg / mL。

2.运行结合反应：

2.1将蛋白质溶液（溶液A）加入一瓶标记染料（组分A）中，通过反复移液几次将其混合均匀，或将小瓶涡旋几秒钟。

注意：使用标记染料的两个小瓶（组分A）通过将100μg蛋白质分成2×50μg蛋白质并使每个50μg蛋白质与一小瓶标记染料反应来标记100μg蛋白质。 将两个小瓶合并用于下一步。

2.2将缀合反应混合物在室温下保持30-60分钟。

注意：如果需要，可以旋转或摇动缀合反应混合物更长的时间。

3.停止共轭反应：

3.1添加5 L（对于50μg蛋白质）或10L（对于100μg蛋白质），其为TQ染色猝灭缓冲液（组分C）的总反应体积的10％到缀合反应混合物中（来自步骤2.2），将它们混合 好。

3.2在室温下孵育10分钟。

3.3标记的蛋白质（抗体）现在可以使用了。

参考文献

Development of a time-resolved fluorescence resonance energy transfer assay for cyclin-dependent kinase 4 and identification of its ATP-noncompetitive inhibitors
Authors: Lo MC, Ngo R, Dai K, Li C, Liang L, Lee J, Emkey R, Eksterowicz J, Ventura M, Young SW, Xiao SH.
Journal: Anal Biochem (2012): 368

Time-Resolved Fluorescence Resonance Energy Transfer as a Versatile Tool in the Development of Homogeneous Cellular Kinase Assays
Authors: Saville L, Spais C, Mason JL, Albom MS, Murthy S, Meyer SL, Ator MA, Angeles TS, Husten J.
Journal: Assay Drug Dev Technol. (2012)

A homogeneous single-label time-resolved fluorescence cAMP assay
Authors: Martikkala E, Rozwandowicz-Jansen A, Hanninen P, Petaja-Repo U, Harma H.
Journal: J Biomol Screen (2011): 356

Homogeneous time-resolved fluorescence-based assay to screen for ligands targeting the growth hormone secretagogue receptor type 1a
Authors: Leyris JP, Roux T, Trinquet E, Verdie P, Fehrentz JA, Oueslati N, Douzon S, Bourrier E, Lamarque L, Gagne D, Galleyrand JC, M’Kadmi C, Martinez J, Mary S, Baneres JL, Marie J.
Journal: Anal Biochem (2011): 253

Oligomerization of the serotonin(1A) receptor in live cells: a time-resolved fluorescence anisotropy approach
Authors: Paila YD, Kombrabail M, Krishnamoorthy G, Chattopadhyay A.
Journal: J Phys Chem B (2011): 11439

Time-resolved fluorescence resonance energy transfer (TR-FRET) to analyze the disruption of EGFR/HER2 dimers: a new method to evaluate the efficiency of targeted therapy using monoclonal antibodies
Authors: Gaborit N, Larbouret C, Vallaghe J, Peyrusson F, Bascoul-Mollevi C, Crapez E, Azria D, Chardes T, Poul MA, Mathis G, Bazin H, Pelegrin A.
Journal: J Biol Chem (2011): 11337

A time-resolved fluorescence-resonance energy transfer assay for identifying inhibitors of hepatitis C virus core dimerization
Authors: Kota S, Scampavia L, Spicer T, Beeler AB, Takahashi V, Snyder JK, Porco JA, Hodder P, Strosberg AD.
Journal: Assay Drug Dev Technol (2010): 96

Ligand regulation of the quaternary organization of cell surface M3 muscarinic acetylcholine receptors analyzed by fluorescence resonance energy transfer (FRET) imaging and homogeneous time-resolved FRET
Authors: Alvarez-Curto E, Ward RJ, Pediani JD, Milligan G.
Journal: J Biol Chem (2010): 23318

Steady-state and time-resolved fluorescence quenching with transition metal ions as short-distance probes for protein conformation
Authors: Posokhov YO, Kyrychenko A, Ladokhin AS.
Journal: Anal Biochem (2010): 284

Time-resolved FRET fluorescence spectroscopy of visible fluorescent protein pairs
Authors: Visser AJ, Laptenok SP, Visser NV, van Hoek A, Birch DJ, Brochon JC, Borst JW.
Journal: Eur Biophys J (2010): 241

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