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Amplite 荧光法羊抗兔IgG-HRP偶联物ELISA检测试剂盒 红色荧光 价格 2823
产品规格
产品货号
Ex (nm) | 571 | Em (nm) | 584 |
分子量 | – | 溶剂 | – |
存储条件 | – |
Amplite 荧光法羊抗兔IgG-HRP偶联物ELISA检测试剂盒是美国AAT Bioquest生产的用于ELISA检测的试剂盒,辣根过氧化物酶(HRP)是广泛用于多种生物学检测的小分子(MW~40KD)。HRP偶联物是广泛用作ELISA(酶联免疫吸附实验)、免疫组化技术、Northern、 Southern和Western blot分析的第二个检测试剂。由于分子量小,因此在与抗体、抗原结合形成复合物时不会带来空间阻碍。它们按4:1的比例与抗体结合。此外,与其它酶标签相比HRP更便宜。Amplite荧光法羊抗兔IgG-HRP偶联物ELISA试剂盒 *红色荧光*含有所有分析必需组分,包括我们的Amplite Red HRP作为底物用于ELISA检测。本试剂盒提供优化分析方案,该方案可应用于高通量液体处理设备,能在微孔板中检出10pg的多抗。它的信号抗原用荧光分析仪读取Ex/Em = 530 to 570 nm/590 to 600 nm或者用酶标仪读取其570nm处的吸光值显示。作为检测试剂,它可以用来分析检测羊抗兔IgG。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商,为您提供优质的Amplite 荧光法羊抗兔IgG-HRP偶联物ELISA检测试剂盒。
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适用仪器
光吸收酶标仪 | |
吸收: | 576 ± 5nm |
推荐孔板: | 透明底板 |
荧光酶标仪 | |
Ex: | 540nm |
Em: | 590nm |
Cutoff: | 570nm |
推荐孔板: | 纯黑色孔板 |
样品实验方案
简要概述
1.准备ELISA板
2.添加山羊抗兔IgG-HRP共轭工作液(100μL/孔)
3.在室温下孵育30分钟
4.清洗孔(PBS-Tween 3X)
5.加入过氧化物酶工作液(100μL/孔)
6.在室温下孵育30-60分钟
7.监测Ex / Em = 540/490 nm处的荧光强度(截止= 570 nm)
溶液制备
1.储备溶液
所有未使用的储备溶液应分成一次性等分试样,并在制备后储存在-20°C。 避免反复冻融循环。
1. Amplite 红色过氧化物酶底物储备液(200X):
将250μLDMSO(组分D)加入到Amplite 红色过氧化物酶底物(组分A)的小瓶中并充分混合以制备200X Amplite 红色过氧化物酶底物储备溶液。 注意:50μL的200X Amplite 红色过氧化物酶底物储备液足以用于1个平板。 应立即使用原液,避光。
2. H2O2储备溶液(20 mM):
将22.7μL的3%H2O2(0.88M,组分B)加入977μL的测定缓冲液(组分C)中以制备20mM H2O2储备溶液。 注意:稀释的H2O2储备溶液不稳定。 应丢弃未使用的部分。
3.工作溶液
将50μL的200X Amplite 红色过氧化物酶底物储备溶液和100μL的20mM H2O2储备溶液加入9.85mL的测定缓冲液(组分C)中并充分混合以制备过氧化物酶工作溶液,避光。
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样品分析
1.准备ELLISA板:
1.1通过执行所有必要的ELISA制备步骤制备ELISA微量培养板(包括适当的对照)。
1.2将2μL山羊抗兔IgG-HRP缀合物(组分E)加入10mL含1%BSA的PBS(PBS-BSA,不包括在内)中以制备山羊抗兔IgG-HRP缀合物工作溶液。注意:10 mL山羊抗兔IgG-HRP结合物工作溶液足以用于1个平板。建议将此山羊抗兔IgG-HRP结合物工作溶液的浓度作为初始浓度进行尝试。每个特定应用的佳浓度可能需要凭经验确定。
1.3用含有0.02%至0.05%Tween 20(PBS-Tween)和排液的PBS洗涤ELISA孔三次。
1.4每孔加入100μL山羊抗兔IgG-HRP结合物工作液。
1.5在室温下孵育30分钟。排出山羊抗兔IgG-HRP结合物。
1.6用PBS-Tween洗涤孔三次并排干。
2.在ELISA板中运行过氧化物酶测定:
2.1在含有样品和对照的每个排出的微孔板中加入100μL过氧化物酶工作溶液。
2.2在室温下孵育反应30分钟或更长时间,避光。
2.3用荧光板读数器在激发= 530-570nm,发射= 590-600nm(佳Ex / Em = 540 / 590nm,截止= 570nm)监测荧光增加。注意:也可以用吸光度酶标仪在576±5 nm的波长下读板。与荧光读数相比,吸收检测具有较低的灵敏度。
参考文献
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Micro-volume wall-less immunoassays using patterned planar plates
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Journal: Lab on a Chip (2013): 1342–1350
Distinguishing inflammation from tumor and peritumoral edema by myeloperoxidase magnetic resonance imaging
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Journal: Clinical Cancer Research (2011): 4484–4493
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